Система індикаторна паперова Agar®СІП2

(для міжродової і видової диференціації ентеробактерій) 

Виріб для діагностики in vitro призначений для міжродової і видової диференціації ентеробактерій.

СКЛАД

Система індикаторна паперова Agar®СІП сорбітом – 1 флакон (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП інозит - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП галоктозідаза - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП фенілаланін - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП хлорид заліза - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП для реакції Фогеса-Проскауера - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП лізин - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП орнітин - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП уреаза - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП малонат натрія - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП цитрат натрія - 1 флакон. (50 дисків).

Система індикаторна паперова Agar®СІП  оксідаза - 1 пакунок. (50 тест смужок).

Система індикаторна паперова Agar®СІП індол - 1 флакон. (50 тест смужок).

Система індикаторна паперова Agar®СІП сірководень - 1 флакон. (50 тест смужок).

Agar®Диски з триптофаном  - 1 флакон. (50 дисків).

Системи індикаторні паперові (СІП) для ідентифікації мікроорганізмів являють собою диски діаметром 8-10 мм або тест смужки з хроматографічного паперу, що містять певні кількості реагентів (субстратів у поєднанні з індикатором), стабілізовані полівініловим спиртом.

ПРИНЦИП АНАЛІТИЧНОГО МЕТОДУ І ПРИНЦИП ДІЇ 

Принцип дії заснований на ідентифікації мікроорганізмів за здатністю до ферментації вуглеводів, оскільки біохімічна активність різних груп мікроорганізмів може відрізнятися.

Здатність до ферментації вуглеводів оцінюють щодо зміни забарвлення внаслідок утворення органічних кислот (зменшення рН), що викликають зміну забарвлення індикатора.

АНАЛІЗОВАНІ ЗРАЗКИ

Дослідження проводять з використанням чистої культури, отриманих з клінічного матеріалу для бактеріологічних досліджень.

СПОСІБ ЗАСТОСУВАННЯ

Визначення оксидазної активності.

Культуру, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 годин при температурі (37±1) °С, розтирають платиновою петлею або скляною паличкою на індикаторній смужці СІП, поміщеній у чашку Петрі. Час спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення утилізації вуглеводів та багатоатомних спиртів.

У пробірці з 0,3 мл стерильного натрію хлориду розчину 0,9 % рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 годин при температурі (37±1) °С, потім занурюють у пробірку СІП-диск із відповідним вуглеводом або багатоатомним спиртом. Середовище в пробірках внаслідок швидкої дифузії у ньому індикатора стає червоним. У разі необхідності обліку газоутворення рекомендується використовувати невелику грудочку стерильної гігроскопічної вати, яку поміщають у пробірку. Як контроль служать СІП-диски, занурені в пробірки зі стерильним натрію хлориду розчином 0,9% рН 7,3±0,1. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення індолутворення.

У пробірці з 0,3 мл стерильного натрію хлориду розчину 0,9 % рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 год при температурі (37±1) °С. Добавляють в пробірку стерильним пінцетом диск з триптофаном , та під кришку пробірки розміщують індол тест смужку, щоб кінець смужки не занурювався у рідину та був на відстані до 1 см від поверхні рідини. Як контроль використовують смужку, вміщену в пробірку зі стерильним натрію хлориду розчином 0,9% рН 7,3±0,1. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення сіководню.

У пробірці з 0,5 мл стерильного поживного бульйону рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 год при температурі (37±1) °С. Під кришку пробірки розміщують смужку на сірководень, таким чином, щоб кінець смужки не занурювався у середовище та був на відстані від 1 до 2,5 см від поверхні середовища. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення уреазної активності.

У пробірці з 0,3 мл стерильного натрію хлориду розчину 0,9 % рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 годин при температурі (37±1) °С, потім у цю суспензію занурюють СІП-диск із сечовиною. Як контроль використовують СІП-диск, поміщений у пробірку зі стерильним хлориду натрію розчином 0,9 % рН 7,3±0,1. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення декарбоксилаз лізину, орнітину.

У пробірці з 0,3 мл стерильного фосфатно-сольового буферного розчину рН 5,5±0,2 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 год при температурі (37±1) °С, потім у цю суспензію занурюють СІП-диск з однією з амінокислот: лізином або орнітином і вносять 0,2 мл стерильного вазелінового масла. Як контроль використовують СІП-диски з відповідними амінокислотами, занурені в пробірки зі стерильним фосфатно-сольовим буферним розчином рН 5,5±0,2 з додаванням 0,2 мл стерильного вазелінового масла. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення галактозідазної активності.

У пробірці з 0,3 мл стерильного натрію хлориду розчину 0,9 % рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 годин при температурі (37±1) °С, потім у цю суспензію занурюють СІП-диск на галактозідазу. Як контроль використовують СІП-диск, поміщений у пробірку зі стерильним хлориду натрію розчином 0,9 % рН 7,3±0,1. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення фенілаланіндезаміназної активності.

У пробірці з 0,3 мл стерильного натрію хлориду розчину 0,9 % рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 годин при температурі (37±1) °С, потім у цю суспензію занурюють СІП-диск з фенілаланіном. Як контроль використовують СІП-диск, поміщений у пробірку зі стерильним хлориду натрію розчином 0,9 % рН 7,3±0,1. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1 та додають СІП диск з хлоридом заліза.

Визначення утилізації цитрата та малоната натрія.

У пробірці з 0,3 мл стерильного фосфатно-сольового буферного розчину рН 5,5±0,2 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 год при температурі (37±1) °С, потім у цю суспензію занурюють СІП-диск з цитратом натрія або малонатом натрія. Як контроль використовують відповідний СІП-диск, занурений в пробірку зі стерильним фосфатно-сольовим буферним розчином рН 5,5±0,2. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1.

Визначення ацетилметилкарбінола (реакція Фогеса-Проскауера).

У пробірці з 0,3 мл стерильного натрію хлориду розчину 0,9 % рН 7,3±0,1 суспендують повну петлю культури, що виросла на поверхні поживного агару для культивування мікроорганізмів протягом 18-24 годин при температурі (37±1) °С, потім у цю суспензію занурюють СІП-диск для реакції Фогеса-Проскауера. Як контроль використовують СІП-диск, поміщений у пробірку зі стерильним хлориду натрію розчином 0,9 % рН 7,3±0,1. Пробірки інкубують за температури (37±1) °С протягом часу спрацьовування згідно таблиці 1 та додають по 1-2 краплі 6 % розчину α-нафтолу та 40% розчину натрій гідроокису, інкубують за температури (37±1) °С протягом 15-20 хв та фіксують результат.

Примітка: стерильний хлориду натрію розчин 0,9 % рН 7,3±0,1 готує споживач безпосередньо перед використанням.

6 % розчин α-нафтолу та 40% розчин натрій гідроокису споживач готує самостійно, термін зберігання 6 % розчину α-нафтолу 7 діб, 40% розчин натрій гідроокису 6 місяців при температурі 20-25 °С в посуді з темного скла, щільно закрито.

Стерильний фосфатно-сольовий буферний розчин рН 5,5±0,2 та набір для приготування 6 % розчину α-нафтолу, 40% розчину натрій гідроокису споживач може придбати у виробника набору.

Реєстрацію результатів проводять візуально згідно таблиці 1

Інтерпритацію результатів проводять відповідно до Таблиці 2

ЗБЕРІГАННЯ

Зберігати при температурі 2-8 °С в захищеному від світла місці після кожного використання. Термін придатності 2 роки.

ІНФОРМАЦІЯ ПРО  ДЕРЖАВНУ РЕЄСТРАЦІЮ

Декларація про відповідність № 1 IVDC-1
Перевірити актуальність реєстрації можливо  на офіційному веб-сайті Державної служби України з лікарських засобів та контролю за наркотиками, в реєстрі відповідальних осіб.